TIROCINIO II ANNO
OBIETTIVI E CONTENUTI
OBIETTIVI FORMATIVI (DETTAGLIO) E RISULTATI DI APPRENDIMENTO
ANATOMIA PATOLOGICA – tecniche istologiche di base
Registrazione e schedatura del materiale |
Conservazione e fissazione del materiale |
Campionatura |
Tecniche di inclusione in paraffina |
Tecniche di taglio |
Preparazioni citologiche per citologia esfoliativa |
Preparazioni citologiche di liquidi |
Colorazioni istologiche di base |
BATTERIOLOGIA
Nozioni sul sistema informatico gestionale della microbiologia |
Acquisizione di tecniche di laboratorio di batteriologia : ambienti, camici, guanti monouso, occhiali e mascherina per manipolazioni particolari |
Contenitori, raccolta , trasporto, accettazione e diritto di rifiuto del campione smistamento del campione |
Terreni di cultura Solidi, liquidi Arricchiti, selettivi Differenziali |
Protocolli di semina dei materiali Interpretazione delle crescite sulle piastre in relazione ai materiali seminati Protocolli per identificazione ed antibiogramma |
Morfologia delle colonie, reisolamento su terreni selettivi |
Preparazione dei vetrini e colorazioni: Gram, Ziel Nilsen, Blu di metilene,inchiostro di china |
Identificazione manuali ed automatiche ,significato di bionumero ed index identificazioni sierologiche |
Antibiogramma manuale, e con l’uso di sistemi automatici, MIC , Etest |
Germi anaerobi: coltura in atmosfera priva di ossigeno, identificazione |
Micologia lieviti e forme miceliali aeree riconoscimento |
CHIMICA CLINICA
Caratteristiche del siero, plasma, anticoagulanti ed esercitazione pratica sul trattamento di tali materiali biologici |
Caratteristiche e funzionamento delle apparecchiature automatizzate per determinazioni di chimica clinica con esercitazione pratica |
Calibrazioni e Verifica quotidiana di qualità (QC) |
Manutenzione ordinaria e straordinaria apparecchiature |
Esame chimico del liquor |
Dimostrazione dei criteri di validazione tecnica dei valori ottenuti, visualizzazione delle carte di controllo di qualità, delle metodiche e della linearità delle reazioni sugli analizzatori |
Esercitazione sui metodi di pipettamento sia automatico che manuale |
Gestione magazzino reagenti e consumabili |
Corretto utilizzo dei DPI per la prevenzione degli infortuni derivanti dal trattamento di materiale biologico |
ELETTROFORESI
Esecuzione dell’elettroforesi delle sieroproteine con metodo Capillarys in fase liquida. |
Acquisizione del principio di funzionamento delle apparecchiature, preparazione dei reattivi e controlli di qualità |
Visualizzazione dei tracciati elettroforetici serici, normali e patologici |
Esecuzione dell’elettroforesi zonale delle urine su gel di agarosio |
Deposizione di campioni di urine su appositi supporti |
Preparazione ed utilizzo di tampone e colorante per elettroforesi su gel |
Dimostrazione delle metodiche di immunofissazione serica e/o urinaria |
Dosaggio delle proteine con metodo nefelometrico . Preparazione dei reagenti, calibrazioni,controlli di qualità e validazione dei risultati |
Utilizzo del programma di gestione informatica dei campioni |
IMMUNOMETRIA
Accettazione, stoccaggio e conservazione dei campioni ( valutazione della loro idoneità, analiti termolabili, tempo critico prelievo- consegna, ecc.) |
strumentazione di base automatica e semiautomatica |
Allestimento e preparazione Routine quotidiana e straordinaria |
Significato dei test eseguiti |
Conoscenza delle principali ricerche immunometriche del settore |
Acquisizione delle principali tecniche applicate in immunometria |
L’automazione in immunometria, uso di questa nella routine giornaliera |
Importanza dell’accuratezza del dato trattato in funzione del controllo/calibrazione eseguiti sulle apparecchiature in uso |
Il computer come sistema integrato nell’analisi immunometrica: impostazione, integrazione, gestione e conclusione di un modello automatizzato di routine |
Rilevazione e trattamento dei dati ottenuti dalle analisi, gestione autonoma dei risultati con conseguente sviluppo delle metodiche di controllo e/o conferma |
Interpretazione dei dati ottenuti alla luce dei diversi test espletati e correlazione con eventuali risultati storicizzati |
L’errore in immunometria: causa, trattamento e rimedio |
Autoimmunità: celiachia e test allergici |
MICOBATTERIOLOGIA (inclusa nel tirocinio Batteriologia
Protezione e sicurezza nelle culture per Micobatteri |
Decontaminazione dei campioni e semina in terreni solidi e liquidi |
Tecniche di amplificazione genica |
Diagnostica delle malattie sessualmente trasmesse : Myc. H., Ureap. u. Clamidya trachomatis Trichomonas |
Modalità didattiche
Attività di apprendimento delle tecniche di Laboratorio specialistiche con frequenza obbligatoria del 100% delle ore pianificate dei Laboratori e apprendimento diretto attraverso l'utilizzo di strumentazioni con la guida di professionisti appartenenti allo stesso Profilo Professionale. Non sono previste ore di studio individuale.
PROGRAMMA/CONTENUTO
Il programma è stato esplicato nella voce "OBIETTIVI FORMATIVI (DETTAGLIO)
DOCENTI E COMMISSIONI
Commissione d'esame
SONIA SCHIAVO (Presidente)
CRISTINA CUSATO
MAURIZIO BARBARESI
ALESSANDRA SIGNORETTI
LEZIONI
Modalità didattiche
Attività di apprendimento delle tecniche di Laboratorio specialistiche con frequenza obbligatoria del 100% delle ore pianificate dei Laboratori e apprendimento diretto attraverso l'utilizzo di strumentazioni con la guida di professionisti appartenenti allo stesso Profilo Professionale. Non sono previste ore di studio individuale.
INIZIO LEZIONI
Il percorso di tirocinio pratico ha inizio dopo la fine delle Lezioni del I semestre dal mese Gennaio al mese Febbraio e dopo le lezioni del II semestre dal mese di Aprile-Maggio al mese di Settembre con una pausa nel mese di Agosto
ESAMI
Modalità d'esame
Verifica delle capacità di esecuzione di test di Laboratorio con descrizione delle modalità di svolgimento e delle finalità del test per accertamenti di tipo clinico -diagnostico.
Modalità di accertamento
L'esame ha luogo alla fine dell'espletamento del tirocinio annuale. Lo studente deve dimostrare di aver acquisito gli obiettivi previsti.